样品收集细节 |
血浆样品 | (1)用采血针和EDTA抗凝管抽取全血,轻柔上下颠倒混匀后室温或者4°C保存,并在1小时内进行下一步处理; (2)4°C条件下,使用吊桶式转头1900g离心10min,小心吸取上清即为血浆,最后500μl左右丢弃。得到的血浆再次离心,条件为4°C,3000g,15min,小心吸出血浆,注意不要碰到底部和侧面的沉淀物; (3)将血浆冻存于-80°C; 提示:送样量最好4mL以上(分离4mL血浆约需要8-10mL全血)。 |
血清样品 (有条件的话尽量采用血浆,避免血小板来源的外泌体影响) | (1)用采血针和普通血清管(不含任何试剂,10mL规格)采血10mL; (2)室温静置30min,然后4°C条件下,静置3~4小时(此时可见血块析出); (3)用移液器吸取上面的淡黄色血清(应该有4mL左右)转入15mL离心管中,4°C条件下3000g离心15min,小心取上清转入新的15mL离心管中,最大程度保证血清质量; (4)离心后的血清15分钟内冻存于-80°C冰箱; 提示:送样量最好4mL以上(分离4mL血清约需要10—15mL全血)。 |
细胞上清 (需采用去除外泌体的培养基) | (1)细胞在正常含有血清的培养基中培养一定时间,贴壁细胞密度在70%-80%,悬浮细胞密度在60%-70%; (2)对于贴壁细胞,去除原有培养基,换为新的不含外泌体的培养基或者无血清培养基;对于悬浮细胞,300g,4°C,10min收集细胞; (3)使用不含外泌体的培养基或者无血清培养基悬浮细胞并继续培养。细胞继续培养24-48小时,根据细胞的生长速度确定收取上清时间; (4)收集细胞上清,300g,4°C,离心10min;小心吸取上清,注意避免吸入细胞或者细胞碎片; (5)3000g,4°C,再次离心15min,确保将细胞或者细胞碎片去除干净; (6)取上清,注意避免吸入细胞或者细胞碎片,合并相同的细胞培养液上清样品,装入无菌的玻璃瓶,可在4°C短期保存(1~2天),长期保存可冻存于-80°C。建议细胞上清分离后尽快进行外泌体分离,保存在4°C和-80°C,都会对产量有一定的影响; (7)寄送时液体不要灌太满,防止结冰后体积膨胀泄露。 |
尿液 | (1)采集前/中后段晨尿,应该尽量选择受试者的“新鲜”尿液100mL,并注意避免细菌污染,收集前注意对饮食的控制,于4℃临时保存(不得超过8h); (2)并于3000×g离心15min,去除细胞或细胞碎片; (3)-80℃冰箱中保存。 |
脑脊液 | (1)收集脑脊液10mL,采集方式为腰椎穿刺,样本一经分离,请务必立即置于冰上或4℃短暂保存(不得超过4h),避免受到血液污染,勿使用含肝素抗凝剂的采样管收集盛放; (2)并于3000×g离心15min,去除细胞或细胞碎片; (3)-80℃冰箱中保存。 |
腹水 | (1)临床收集腹水后若不能第一时间处理,请于4℃临时保存(不得超过8h); (2)将采集到的腹水在4℃下(室温亦可)离心2000g,20min,去除腹水中的残渣; (3)-80℃冰箱中保存。 |
注意事项:
●已经提取好的外泌体检测NTA、电镜、wb时不一定要严格按照上述送样体积,因为一般都是PBS溶解的,如果浓度高的样本1μL就可以做NTA和电镜,主要是看浓度;wb检测时5μg就可以点一个孔。
●样本发生溶血,则弃掉。
●样本编号用油性笔清楚地写在管壁及管盖上。
●离心管在放入冰箱前,用封口膜密封。
●如果提供的是冻存细胞株,需提供详尽的复苏方法及培养基。
●细胞培养基去除血清中外泌体,可以考虑超离去除。
●分离外泌体前的样品不能加入任何RNA保护剂(如Trizol)。
●分离好的外泌体如需进行电镜观察,需要放4°C保存,并且不宜保存太久。
●长时间保存的样本以原液-80°C保存会比提取外泌体后保存更好。
●储存条件以及储存时间影响外泌体得率,保存在-80℃冰箱中的样本,如果储存时间过长,外泌体产量也会显著降低。
●干冰运输应采用壁厚且质量完好的泡沫箱,24小时到达的,干冰数量不得低于5公斤;48小时到达的,干冰数量不得低于8公斤;夏季适当增加干冰(1.5倍)。